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Aug 26, 2023

xeno

Journal of Translational Medicine volume 20, Número do artigo: 421 (2022) Citar este artigo

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Atualmente, não há terapia regenerativa para pacientes com distúrbios neurológicos e neurodegenerativos. As terapias celulares surgiram como um tratamento potencial para inúmeras doenças cerebrais. Apesar dos recentes avanços na tecnologia de células-tronco, grandes preocupações foram levantadas em relação à viabilidade e segurança de terapias celulares para aplicações clínicas.

Geramos células progenitoras neurais (NPCs) compatíveis com boas práticas de fabricação (GMP) a partir de células-tronco pluripotentes induzidas por transgenes e xeno-free (iPSCs) que podem ser facilmente adaptadas para aplicações clínicas. Os NPCs foram caracterizados in vitro quanto ao seu potencial de diferenciação e in vivo após o transplante em camundongos de tipo selvagem, bem como em camundongos imunossuprimidos geneticamente.

Os NPCs gerados tinham uma expressão genética estável em pelo menos 15 passagens e podiam ser dimensionados para até 1018 células por 106 células inicialmente semeadas. Após a retirada dos fatores de crescimento in vitro, as células adaptaram um destino neural e se diferenciaram principalmente em neurônios ativos. Para garantir uma população NPC pura para aplicações in vivo, reduzimos o risco de contaminação de iPSC aplicando a tecnologia de micro troca de RNA como um ponto de verificação de segurança. Usando a transdução lentiviral com uma construção de repórter duplo fluorescente e bioluminescente, combinada com imagens bioluminescentes in vivo não invasivas, rastreamos longitudinalmente as células enxertadas em camundongos saudáveis ​​de tipo selvagem e imunossuprimidos geneticamente, bem como em um modelo de camundongo de acidente vascular cerebral isquêmico. A caracterização aprofundada de longo prazo revelou que os NPCs transplantados têm a capacidade de sobreviver e se diferenciar espontaneamente em neurônios funcionais e maduros ao longo de um mês, enquanto nenhuma célula pluripotente residual foi detectada.

Descrevemos a geração de NPCs livres de transgenes e xeno. Este protocolo de diferenciação simples combinado com a capacidade de rastreamento celular in vivo apresenta uma ferramenta valiosa para desenvolver terapias celulares seguras e eficazes para várias lesões cerebrais.

As doenças neurodegenerativas e outras lesões cerebrais representam um enorme fardo pessoal e econômico [1]. A terapia baseada em células é considerada um paradigma de tratamento emergente que tem o potencial de regenerar tecidos danificados e restaurar a função cerebral. Embora a segurança e a viabilidade da administração de diferentes tipos de terapias com células-tronco pareçam razoavelmente comprovadas, sua eficácia permanece incerta devido a resultados conflitantes em ensaios clínicos [2]. Uma limitação importante em uma configuração clínica é a escolha de uma fonte de células confiável e escalável, pois a dosagem de até 1 bilhão de células pode ser necessária para um único transplante [3]. A maioria dos ensaios clínicos depende do uso de células-tronco mesenquimais primárias (MSCs) devido à sua presença onipresente no corpo adulto. No entanto, MSCs têm grandes desvantagens no que diz respeito à heterogeneidade, escalabilidade e potencial de diferenciação, especialmente em tipos de células da linhagem neural. Desenvolvimentos recentes na tecnologia de células-tronco pluripotentes induzidas (iPSC) facilitaram a geração infinita de células progenitoras neurais (NPCs), uma fonte de células mais homogênea para regeneração cerebral por meio de substituição celular, neuroproteção e/ou imunomodulação [4].

Ao avançar a tecnologia iPSC para a realidade clínica, surgiram desafios em relação à presença de transgenes após a reprogramação, fatores xenogênicos em meios de cultura e o risco de formação de teratoma a partir de células indiferenciadas em receptores de enxerto [5].

O uso do vetor do vírus RNA Sendai não integrativo permitiu a reprogramação livre de vetores e sequências transgênicas [6]. Além disso, protocolos aprimorados para diferenciação e cultura de NPC permitiram a propagação em meios definidos, omitindo fatores xenogênicos [7]. O risco de formação de teratoma pode ser reduzido pela aplicação de protocolos de diferenciação altamente eficientes e/ou técnicas de purificação eficazes, como a tecnologia RNA Switch para eliminar especificamente resíduos pluripotentes de culturas [8, 9]. Esta técnica é baseada na presença de micro RNA específico da célula (miRNA), que pode ser usado para enriquecer ou eliminar um tipo específico de célula de uma cultura celular. Esses avanços aumentaram a segurança e a viabilidade de NPCs para aplicações pré-clínicas e clínicas in vivo. No entanto, ainda há pouca compreensão da cinética espaço-temporal, capacidades de sobrevivência e fenótipo de diferenciação de células transplantadas em um sistema in vivo que precisam ser respondidas antes de traduzir as terapias celulares em aplicações clínicas padrão.

 0.05). Elevated levels of BRN2 and FOXG1 suggested the presence of excitatory cortical neurons. To confirm that differentiated neural cells were active and reacted to stimulation, we expressed mRuby2 and the calcium sensor GCaMP6s under the human synapsin 1 promoter using adeno-associated virus (AAV) (Fig. 2D). Expression of mRuby was only observed in differentiated neural cells but not in undifferentiated NPCs (p < 0.001, Fig. 2E, F) indicating activity of the synapsin 1 promotor only in differentiated cells. Neural cells showed higher GCaMP6s signals already at baseline and addition of 60 mM KCl immediately increased GCaMP6s fluorescence, analyzed by confocal live imaging (Fig. 2G, H)./p> 75% for further 14 h (Additional file 4: Figure S4)./p>

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